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一文讀懂共聚焦顯微鏡

更新時間:2025-08-06      點擊次數:164
  一、概述
 
  共聚焦顯微鏡不同于普通熒光顯微鏡,它利用針孔的物理限制,僅允許來自焦平面的光聚焦進入探測器,而將焦平面上方和下方的模糊熒光信號(離焦光)阻擋在外。這帶來了顯著的優勢:
 
  ??光學切片能力:?? 獲得樣品內部特定深度、薄層(通常在0.5 - 2微米)的高分辨率圖像。
 
  ??更高的分辨率:?? 主要是在軸向(Z方向,沿光軸方向)分辨率顯著提高。
 
  ??背景抑制:?? 大幅減少來自非焦平面的背景噪音,提升圖像的對比度和清晰度。
 
  ??三維重建:?? 通過對樣品不同深度進行連續掃描,可重建三維結構。
 
  ??點掃描成像:?? 圖像是通過逐點掃描激光束并逐點采集信號形成的,速度通常比寬場熒光顯微鏡慢。
 
  二、關鍵組件
 
  1.激光光源: 提供高強度、單色性好、方向性好的激發光。通常配備多個不同波長的激光器,用于激發不同的熒光染料。
 
  2.掃描裝置:
 
  掃描振鏡: 核心部件,通常是兩個高速振動的反射鏡(X軸和Y軸),精確控制激光束在樣本表面的掃描路徑。
 
  掃描透鏡與管透鏡: 確保掃描光束精確聚焦在物鏡的后焦面,實現無畸變掃描。
 
  3.分光鏡/二向色鏡: 將激發光反射到樣本方向,同時允許樣本發射的熒光透射到探測光路。需要根據所用熒光染料的激發和發射光譜選擇合適的鏡片。
 
  4.物鏡: 高質量、高數值孔徑(NA)的物鏡至關重要,它決定了系統的分辨率、光收集效率和成像深度。
 
  5.共軛針孔:
 
  照明針孔: 位于光源后,將激光變成點光源。
 
  探測針孔: 位于探測器前,阻擋離焦光。針孔大小可調,是控制光學切片厚度和圖像信噪比的關鍵參數(小針孔切片薄、分辨率高但信號弱;大針孔切片厚、信號強但分辨率降低)。
 
  6.探測器: 通常是高靈敏度的光電倍增管或雪崩光電二極管,將微弱的光信號轉換為電信號。
 
  7.計算機控制系統: 控制掃描、Z軸移動、激光強度、針孔大小、探測器增益、圖像采集和處理等所有參數。
 
  8.熒光濾光片組: 位于探測光路中,進一步阻擋殘留的激發光和其他波長的雜散光,確保探測到的是特定發射波長的純凈熒光信號(發射濾光片)。
 
  三、主要優勢
 
  1.高軸向分辨率(Z分辨率)與光學切片能力: 這是突出的優勢。能清晰區分樣本中不同深度的結構,獲得樣本內部不同層面的清晰圖像,無需物理切片即可進行三維成像。
 
  2.高對比度: 有效抑制離焦背景光干擾,顯著提高圖像的清晰度和信噪比,特別適合觀察厚樣本或弱熒光信號。
 
  3.高分辨率: 相比傳統寬場熒光顯微鏡,共聚焦顯微鏡的X-Y平面分辨率也有一定提升(約1.4倍),尤其在利用某些技術后分辨率可接近光學衍射極限。
 
  4.三維重建: 可對活體或固定樣本進行非侵入性的三維結構解析。
 
  5.多通道成像: 可同時或依次使用不同波長的激光激發不同的熒光標記物,實現多色標記樣本的多通道成像,研究不同分子或結構的共定位。
 
  6.活細胞成像: 減少光毒性和光漂白(相對于寬場需要更短的曝光時間獲取清晰圖像),結合合適的培養系統,可用于長時間觀察活細胞內的動態過程。
 
  7.圖像后處理: 強大的軟件支持進行三維可視化、表面渲染、體積測量、共定位分析、熒光強度定量分析等。
 
  四、主要應用領域
 
  1.細胞生物學:
 
  細胞器結構與動態(線粒體、內質網、高爾基體、細胞骨架)。
 
  細胞膜結構與流動性。
 
  細胞內離子濃度(如Ca²?, pH)成像。
 
  基因表達與蛋白定位。
 
  細胞間相互作用(如免疫突觸)。
 
  細胞遷移與分裂。
 
  2.神經科學:
 
  神經元形態與樹突棘結構。
 
  神經網絡連接。
 
  突觸結構與功能。
 
  神經遞質釋放與受體分布。
 
  3.發育生物學: 胚胎發育過程的三維形態發生、基因表達模式。
 
  4.病理學與臨床診斷:
 
  組織病理學切片分析(提供比普通光鏡更豐富的亞細胞信息)。
 
  皮膚科在體共聚焦顯微鏡用于無創診斷皮膚病(如黑色素瘤)。
 
  5.免疫學: 免疫細胞激活、遷移、與靶細胞的相互作用。
 
  6.微生物學: 細菌、真菌在宿主細胞內的生存、生物膜結構。
 
  7.植物學: 植物細胞結構、細胞壁、葉綠體、基因表達。
 
  8.材料科學: 材料表面形貌、涂層厚度、薄膜結構、微電子器件檢測、高分子材料結構等(常使用反射模式)。
 
  五、關鍵注意事項與實踐??
 
  ??1.降低光毒性/光漂白:?? 這是活細胞成像的首要原則!
 
  ??最小激發強度:?? 使用??低有效??激光功率。
 
  ??最小有效曝光時間:?? 使用最快掃描速度或減少平均次數。僅在必要時才使用慢掃描和高平均。
 
  ??縮短總曝光時間:?? 避免在感興趣區域進行不必要的預掃描和尋找焦點操作。盡快找到位置聚焦完成拍攝。
 
  使用盡可能低的增益。
 
  使用高量子效率探測器,降低激發光需求。
 
  使用抗淬滅試劑(僅限固定樣品,活樣品可能無效或有害)。
 
  ??2.針孔調整:??
 
  并非針孔越小越好。過小的針孔會嚴重損失信號。
 
  只有在需要最高分辨率或研究較薄樣品結構時,才考慮縮小針孔。
 
  如果樣品很厚信號很弱或不需要超薄切片時,可以適當增大針孔以獲得足夠信噪比。
 
  ??3.選擇合適的物鏡:??
 
  ??數值孔徑(NA)是分辨率的關鍵!?? 優先選擇高NA物鏡。
 
  浸沒介質選擇:油鏡分辨率最高,適用于蓋玻片固定的薄樣品;水鏡適用于活細胞長時間成像(避免折射率不匹配引起的球差);硅油或甘油鏡適用于深組織成像。
 
  放大倍數與視野、分辨率相匹配。
 
  ??4.實驗設計:??
 
  選擇合適的熒光染料/蛋白,確保激發波長與激光匹配,發射波段范圍與檢測通道匹配。注意熒光串擾。
 
  預實驗很重要:在不同條件下測試多種參數組合,找到最佳設置。
 
  ??5.儀器維護與安全:??
 
  嚴格遵守激光安全規程:??絕對不要直視激光束!??
 
  保持顯微鏡平臺穩定無震動。
 
  保持環境清潔(灰塵是光學系統大敵)。
 
  定期(按規程)由專業工程師進行系統校準(如激光準直、針孔校準、PMT校準)。
 
共聚焦顯微鏡